网络药理学:15、草稿暂存区(autodock vina)

news2024/12/23 1:17:15

TCMSP

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韦恩图在线网站

https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.html

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String数据库参数详解:https://www.bilibili.com/video/BV1q64y1k7Zf?p=16&vd_source=aed4c634975918b14b7354ec93ce5389

David数据库可以用基因ID或者基因名。

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KEGG数据库使用:https://www.bilibili.com/video/BV1q64y1k7Zf?p=18&vd_source=aed4c634975918b14b7354ec93ce5389

R语言和RStudio(R语言的开发环境)安装和下载

建议参考如下文章:
https://www.bilibili.com/read/cv26777416/

Cytoscape下载

见如下博客:
http://t.csdnimg.cn/vIYfj

注意:Cytoscape不建议下载3.10.x版本的,建议下载3.8.2版本的。因为前者的插件不再集成在软件内部了,需要自己额外去网站上下载到本地并导入,比较麻烦。

分子对接能量

文献里是小于-4代表有结合能力,小于-5结合性较强,-6还行,当然越低越好。

分子对接前选择合适的蛋白受体(基因名已知,选取合适的蛋白结构下载PDB格式文件)

X-Ray
不能太高也不能太低,太高的话分辨率比较低,看不清晰。太低的话很容易有残基缺损。一般≤2.5
POSITIONS是总长,一般选择长一点的。300左右的算较短,450算是合适。
尽量挑选structure区有小分子结晶的。

选择合适的蛋白受体

https://cloud.tencent.com/developer/article/1793665

b站:分子对接 - 怎么从PDB数据库选蛋白结构 https://www.bilibili.com/video/BV1E64y1Z77W

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pH接近7

不推荐:
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还行:
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分子对接autodock补充事项

可以设置工作目录
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autodock vina

autodock vina的步骤和autodock速通版的步骤都一样的。一直到16:49秒之后才是autodock vina。

这个视频,从
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这个视频
结合来看

加载蛋白:选择File/Read Molecule后选择文件加载
加氢:选择Edit/Hydrogens/Add进行加氢,弹出两个页面都直接选YES。
计算总电荷:选择Edit/Chargs/Compute Gasteiger
指定原子类型:选择Edit–Atoms–Assign AD4 type
转为pdbqt文件:选择File/save/write PDBQT后直接点击OK
小分子配体准备(如果事先准备了小分子的pdbqt文件,可以跳过)
重新打开autodock tools软件,或者点击Edit/Delete/Delete All Molecules清空页面。
加载配体:选择Ligand/Input/Open(可能跳出弹窗,直接选择yes即可)
选择并判断配体的Root:选择Ligand> Torsion Tree > Choose Root”和“Ligand > Torsion Tree > Detect Root。
加载更多Root:选择Ligand > Torsion Tree > Show Root Expansion
查看可旋转的键:选择Ligand > Torsion Tree > Choose Torsion
保存成PDBQT:选择Ligand—Output > Save as PDBQT
随后点击Edit/Delete/Delete All Molecules清空软件页面

加载大分子蛋白:Grid > Macromoleculr > Open 再次打开大分子蛋白的pdbqt格式文件(冒出三个弹窗,全部选YES

加载小分子配体:选择Grid > Set Map Types > Choose Ligand…或Grid > Set Map Types > Open Ligand…打开小分子配体的pdbqt格式文件

设置并保存对接口袋:选择Grid > Grid Box…设置好口袋大小后点击Grid Options弹窗的File > Close saving current退出。

Docking > Output > Vina,得到config.txt(直接save即可)

Run > Run autodock vina ,加载刚刚的config.txt

得到的是小分子配体_out.pdbqt文件

结果分析
点击Edit/Delete/Delete All Molecules清空页面。

Analyze > Dockings > Open AutoDock vina result

转为pdb文件:选择File/save/write PDB后直接点击OK
或者转为pdbqt文件:转为pdbqt文件:选择File/save/write PDBQT后直接点击OK

gromacs

1、在pymol里面打开autodock vina得到的pdbqt格式文件
或者pdb格式文件

看到的是配体的样子

2、再导入(去水去配体)的蛋白质的pdb格式文件

3、导出成complex.pdb格式文件

4、文本/记事本打开complex.pdb格式文件

HETATM开头的行都是小分子配体
ATOM开头的行都是蛋白质

5、将HETATM的行剪切出来到新的文本文件,命名为"unk.pdb"
剩余行的另存为一个新的文本文件,命名为"protein.pdb"

6、再将unk.pdb加氢之后转化为mol2格式文件(可以用Avogadro软件)

第3-6步可以转换为直接在pymol中选中配体,单独导出为mol2文件

gromacs 2022.2

gmx pdb2gmx -f your_structure.pdb -o processed.gro

gmx pdb2gmx -f your_structure.pdb -o processed.gro -ignh

-ignh是忽视水分子

输入1选择力场
再按1选择水模型
再回车

sort_mol2_bonds.pl unk.mol2 unk_fix.mol2
结果看到类似Found 80 atoms in the molecule , with 84 bonds即可

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上来就要mdp文件,也不演示一下从哪里下载。

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无人声,无讲解。

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